Анализ пцр днк коклюш
Содержание статьи
Коклюш, ДНК возбудителя (Bordetella pertussis, ПЦР) соскоб, кач. в Москве
Код 19.38. Соскоб
- Приём, исследование биоматериала
- Показания к назначению
- Описание
Приём и исследование биоматериала
Приём материала
- Можно сдать в отделении Гемотест
- Можно сдать анализ дома
Метод исследования
Полимеразная цепная реакция
Формат представления результата
Качественный
Когда нужно сдавать анализ Коклюш, ДНК возбудителя (Bordetella pertussis, ПЦР) соскоб, кач.?
Диагностика коклюша.
Обследование контактных по коклюшу лиц.
Дифференциальная диагностика коклюша и паракоклюша.
Подробное описание исследования
Исследование качественное, проводится методом ПЦР (полимеразной цепной реакции) и позволяет обнаружить ДНК Bordetella pertussis. Используется для диагностики коклюша.
Полимеразная цепная реакция (ПЦР) — метод, позволяющий идентифицировать ДНК возбудителя даже в очень малом количестве. Исследование используется для ранней диагностики заболевания: оптимальным сроком для сдачи анализа являются первые 10-14 дней.
Bordetella pertussis (Бордетелла пертуссис) — бактерия, возбудитель коклюша. Микроорганизм неустойчив во внешней среде, поэтому для заражения требуется длительный и близкий контакт с больным человеком или носителем возбудителя. Путь передачи инфекции — воздушно-капельный.
Характерные признаки коклюша:
спазматический «лающий» сухой кашель;
отсутствие первичной лихорадки;
цикличность развития;
нарастание симптомов в течение болезни.
Чаще всего болеют дети до 5 лет. Восприимчивость также повышается во время беременности. Для взрослых характерно атипичное течение.
У коклюша выделяют четыре периода:
инкубационный — скрытый, бессимптомный;
катаральный — длится 7-14 дней, характеризуется кашлем, насморком, гиперемией зева и повышением температуры тела до 38 ºС;
спазматический — продолжается 3-4 недели; в это времяпроисходит увеличение силы и продолжительности кашля, учащение приступов, которые иногда доходят до рвоты;
обратного развития — через 3-4 недели приступы становятся реже, симптомы болезни исчезают.
Что ещё назначают с этим исследованием?
50.83.1295. Венозная кровь 1 день
Использованная литература
- Клинические рекомендации: Коклюш у детей — 2019.
Инфекции дыхательных путей. Диагностика коклюша и паракоклюша. — Методические рекомендации МР 3.1.2.0072-13.
Клинические рекомендации (протокол лечения) оказания медицинской помощи детям больным коклюшем — 2013.
- Подготовка к исследованию
- Противопоказания и ограничения
Подготовка к исследованию
С момента прекращения приема антибиотиков до взятия биоматериала должно пройти не менее 2 недель.
Соскоб из зева сдают натощак или не ранее чем через 2 часа после последнего приема пищи.
Противопоказания и ограничения
Абсолютных противопоказаний нет.
- Интерпретация результата
- Референсные значения
- Аналитические показатели
Интерпретация результата
Положительный результат: обнаружение в материале фрагментов ДНК Bordetella pertussis говорит о наличии коклюша или транзиторного носительства бактерии.
Отрицательный результат: отсутствие следов возбудителя в биоматериале свидетельствует об отсутствии заболевания.
Референсные значения
Не обнаружена.
Аналитические показатели
Аналитическая чувствительность 1х10*3 ГЭ/мл.
Bordetella pertussis (возбудитель коклюша).
Специфичность метода — 100%.
Источник
Bordetella pertussis, ДНК [ПЦР]
Bordetella pertussis, ДНК [ПЦР]
Общая информация об исследовании
Bordetella pertussis (B. pertussis) — это грамотрицательная аэробная коккобацилла, являющаяся возбудителем коклюша. Инфекция передается воздушно-капельным путем. Риск заболеть наиболее высок у не вакцинированных АКДС детей и беременных женщин. Следует отметить, что прививка АКДС не обеспечивает стопроцентную защиту от заражения, так как иммунный ответ постепенно угасает в течение 1-3 лет после вакцинации. В этой связи подростки и взрослые, вакцинированные более чем 3 года назад и находившиеся в тесном контакте с больным коклюшом или носителем B. pertussis, также подвергаются риску заражения.
В клинической практике применяют несколько лабораторных тестов для диагностики коклюша: посев на питательную среду, метод прямой иммунофлюоресценции (ПИФ), серологические методы и исследование с помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР). ПЦР — метод молекулярной диагностики, позволяющий выявлять в биологическом материале (например, в носоглоточном аспирате) фрагменты генетического материала (ДНК) возбудителя инфекции и наиболее точно и быстро диагностировать коклюш.
Специфичность ПЦР достигает 100 %, что обусловлено использованием в реакции специфичной именно для B. pertussis пары праймеров. Положительный результат у пациента с признаками поражения респираторного тракта позволяет подтвердить диагноз «коклюш» и исключить наличие других бактериальных (в том числе паракоклюша) и вирусных заболеваний.
Исследование с помощью ПЦР характеризуется высокой чувствительностью, превосходящей чувствительность бактериологического метода, ПИФ и реакции непрямой гемагглютинации (РНГА). Следует, однако, заметить, что она зависит от клинической стадии заболевания, в которую был взят биоматериал, от возраста пациента и предшествующего лечения.
В течении коклюша можно выделить 4 стадии: инкубационный период, катаральную, пароксизмальную стадию и стадию выздоровления. ПЦР является предпочтительным методом идентификации возбудителя при подозрении на коклюш в катаральную и раннюю пароксизмальную стадию (около 4 недель после появления первых симптомов). В этот период чувствительность ПЦР максимальна и превосходит чувствительность бактериологического метода. По прошествии более 3-4 недель чувствительность ПЦР несколько снижается. Это имеет особое значение при диагностике заболевания у взрослых пациентов, которые, как правило, игнорируют первые симптомы болезни, характерные для катаральной стадии, и обращаются за помощью в более поздние сроки, в пароксизмальную стадию. При диагностике коклюша в позднюю пароксизмальную стадию и при выздоровлении наиболее точные результаты будут получены при комбинации серологических исследований (например, РНГА) и исследования с помощью ПЦР.
Также ПЦР оптимальна для диагностики коклюша у младенцев, хотя у детей старшего возраста, а также подростков и взрослых она характеризуется большим числом ложноотрицательных результатов. Так, ее чувствительность при взятии биоматериала в первые 10 дней болезни в возрастных группах до 1 года, 1-4 года и старше 5 лет составила 70, 50 и 10 % (для сравнения: чувствительность «золотого стандарта» диагностики коклюша — посева на питательную среду — в этот период не превышает 60 %). В качестве биоматериала для диагностики коклюша у младенцев предпочтителен носоглоточный аспират. У детей старшего возраста, подростков и взрослых берут мазки из носоглотки и зева. Использование тампона из кальция альгината в этом случае не рекомендуется.
В отличие от других лабораторных методов, точность ПЦР в меньшей степени зависит от приема антибактериальных препаратов. Так, чувствительность метода при взятии биоматериала на 4-й день лечения эритромицином составила 89 % (бактериологического посева — 56 %), на 7-й день — 56 % (посева — 0). Поэтому ПЦР чаще выбирают для выявления B. pertussis у пациентов в катаральной стадии заболевания, если биоматериал сдается на фоне начатого лечения. Результаты теста при сдаче биоматериала на фоне лечения в пароксизмальную стадию во многих случаях ложноотрицательные.
Исследование с помощью ПЦР с успехом применяется у вакцинированных АКДС пациентов. При этом идентификация B. pertussis в мазках этой группы может означать транзиторное носительство, но не активную инфекцию, поэтому результаты ПЦР рекомендуется оценивать с помощью дополнительных эпидемиологических, клинических и лабораторных данных.
Для чего используется исследование?
- Для диагностики коклюша, особенно у младенцев в период катаральной и ранней пароксизмальной стадии заболевания.
Когда назначается исследование?
- При симптомах коклюша в катаральной стадии: лихорадка, насморк, заложенность носа, слезотечение.
- При симптомах коклюша в пароксизмальной стадии: приступы интенсивного кашля, сопровождающиеся глубоким свистящим вдохом, рвотой, цианозом кожи лица.
- При обследовании пациента, находившегося в тесном контакте с больным коклюшем.
Источник
Bordetella pertussis, ДНК [ПЦР]
[09-038] Bordetella pertussis, ДНК [ПЦР]
425 руб.
Выявление возбудителя коклюша (Bordetella pertussis), в ходе которого с помощью метода полимеразной цепной реакции определяется генетический материал (ДНК) микроорганизма в биоматериале.
Синонимы русские
Палочка коклюша, бактерия Борде — Жангу [полимеразная цепная реакция].
Синонимы английские
Whooping cough, B. pertussis, DNA [Polymerase chain reaction].
Метод исследования
Полимеразная цепная реакция в режиме реального времени.
Какой биоматериал можно использовать для исследования?
Мазок из носоглотки, мазок из зева (ротоглотки).
Как правильно подготовиться к исследованию?
- За 3-4 часа до взятия мазков из ротоглотки (зева) не употреблять пищу, не пить, не чистить зубы, не полоскать рот/горло, не жевать жевательную резинку, не курить. За 3-4 часа до взятия мазков из носа не закапывать капли/спреи и не промывать нос. Взятие мазков оптимально выполнять утром, сразу после ночного сна.
Общая информация об исследовании
Bordetella pertussis (B. pertussis) — это грамотрицательная аэробная коккобацилла, являющаяся возбудителем коклюша. Инфекция передается воздушно-капельным путем. Риск заболеть наиболее высок у не вакцинированных АКДС детей и беременных женщин. Следует отметить, что прививка АКДС не обеспечивает стопроцентную защиту от заражения, так как иммунный ответ постепенно угасает в течение 1-3 лет после вакцинации. В этой связи подростки и взрослые, вакцинированные более чем 3 года назад и находившиеся в тесном контакте с больным коклюшом или носителем B. pertussis, также подвергаются риску заражения.
В клинической практике применяют несколько лабораторных тестов для диагностики коклюша: посев на питательную среду, метод прямой иммунофлюоресценции (ПИФ), серологические методы и исследование с помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР). ПЦР — метод молекулярной диагностики, позволяющий выявлять в биологическом материале (например, в носоглоточном аспирате) фрагменты генетического материала (ДНК) возбудителя инфекции и наиболее точно и быстро диагностировать коклюш.
Специфичность ПЦР достигает 100 %, что обусловлено использованием в реакции специфичной именно для B. pertussis пары праймеров. Положительный результат у пациента с признаками поражения респираторного тракта позволяет подтвердить диагноз «коклюш» и исключить наличие других бактериальных (в том числе паракоклюша) и вирусных заболеваний.
Исследование с помощью ПЦР характеризуется высокой чувствительностью, превосходящей чувствительность бактериологического метода, ПИФ и реакции непрямой гемагглютинации (РНГА). Следует, однако, заметить, что она зависит от клинической стадии заболевания, в которую был взят биоматериал, от возраста пациента и предшествующего лечения.
В течении коклюша можно выделить 4 стадии: инкубационный период, катаральную, пароксизмальную стадию и стадию выздоровления. ПЦР является предпочтительным методом идентификации возбудителя при подозрении на коклюш в катаральную и раннюю пароксизмальную стадию (около 4 недель после появления первых симптомов). В этот период чувствительность ПЦР максимальна и превосходит чувствительность бактериологического метода. По прошествии более 3-4 недель чувствительность ПЦР несколько снижается. Это имеет особое значение при диагностике заболевания у взрослых пациентов, которые, как правило, игнорируют первые симптомы болезни, характерные для катаральной стадии, и обращаются за помощью в более поздние сроки, в пароксизмальную стадию. При диагностике коклюша в позднюю пароксизмальную стадию и при выздоровлении наиболее точные результаты будут получены при комбинации серологических исследований (например, РНГА) и исследования с помощью ПЦР.
Также ПЦР оптимальна для диагностики коклюша у младенцев, хотя у детей старшего возраста, а также подростков и взрослых она характеризуется большим числом ложноотрицательных результатов. Так, ее чувствительность при взятии биоматериала в первые 10 дней болезни в возрастных группах до 1 года, 1-4 года и старше 5 лет составила 70, 50 и 10 % (для сравнения: чувствительность «золотого стандарта» диагностики коклюша — посева на питательную среду — в этот период не превышает 60 %). В качестве биоматериала для диагностики коклюша у младенцев предпочтителен носоглоточный аспират. У детей старшего возраста, подростков и взрослых берут мазки из носоглотки и зева. Использование тампона из кальция альгината в этом случае не рекомендуется.
В отличие от других лабораторных методов, точность ПЦР в меньшей степени зависит от приема антибактериальных препаратов. Так, чувствительность метода при взятии биоматериала на 4-й день лечения эритромицином составила 89 % (бактериологического посева — 56 %), на 7-й день — 56 % (посева — 0). Поэтому ПЦР чаще выбирают для выявления B. pertussis у пациентов в катаральной стадии заболевания, если биоматериал сдается на фоне начатого лечения. Результаты теста при сдаче биоматериала на фоне лечения в пароксизмальную стадию во многих случаях ложноотрицательные.
Исследование с помощью ПЦР с успехом применяется у вакцинированных АКДС пациентов. При этом идентификация B. pertussis в мазках этой группы может означать транзиторное носительство, но не активную инфекцию, поэтому результаты ПЦР рекомендуется оценивать с помощью дополнительных эпидемиологических, клинических и лабораторных данных.
Для чего используется исследование?
- Для диагностики коклюша, особенно у младенцев в период катаральной и ранней пароксизмальной стадии заболевания.
Когда назначается исследование?
- При симптомах коклюша в катаральной стадии: лихорадка, насморк, заложенность носа, слезотечение.
- При симптомах коклюша в пароксизмальной стадии: приступы интенсивного кашля, сопровождающиеся глубоким свистящим вдохом, рвотой, цианозом кожи лица.
- При обследовании пациента, находившегося в тесном контакте с больным коклюшем.
Что означают результаты?
Референсные значения: отрицательно.
Причины положительного результата:
- коклюш;
- транзиторное носительство.
Причины отрицательного результата:
- отсутствие коклюша;
- ложноотрицательные результаты чаще наблюдаются при сдаче биоматериала в позднюю пароксизмальную стадию и стадию реконвалесценции, на фоне лечения антибиотиками.
Что может влиять на результат?
- Стадия заболевания — наиболее точный результат будет получен при сдаче анализа в первые 3-4 недели после начала заболевания.
- Возраст пациента — наиболее точный результат будет получен при обследовании пациентов в возрасте до 1 года.
- Применение эритромицина и других антибиотиков может приводить к ложноотрицательным результатам.
Важные замечания
- Анализ не предназначен для оценки эффективности лечения.
- Результат исследования следует оценивать с помощью дополнительных эпидемиологических, клинических и лабораторных данных.
Также рекомендуется
- Посев на Bordetella pertussis/parapertussis
- anti-Bordetella pertussis, anti-Bordetella parapertussis
- Лейкоцитарная формула
Кто назначает исследование?
Инфекционист, педиатр, пульмонолог, врач общей практики.
Литература
- Laboratory manual for the diagnosis of whooping cough caused by Bordetella pertussis / Bordetella parapertussis. World Health Organization. Dept. of Immunization, Vaccines and Biologicals. WHO/IVB/04.14, 2004.
- Müller FM, Hoppe JE, Wirsing von König CH. Laboratory diagnosis of pertussis: e of the art in 1997. J Clin Microbiol. 1997 Oct;35(10):2435-43.
- Riffelmann M, Wirsing von König CH, Caro V, Guiso N; Pertussis PCR Consesus Group. Nucleic Acid amplification tests for diagnosis of Bordetella infections. J Clin Microbiol. 2005 Oct;43(10):4925-9.
- Lind-Brandberg L, Welinder-Olsson C, Lagergård T, Taranger J, Trollfors B, Zackrisson G. Evaluation of PCR for diagnosis of Bordetella pertussis and Bordetella parapertussis infections. J Clin Microbiol. 1998 Mar;36(3):679-83.
- Dalby T, Krogfelt KA. Laboratory diagnosis of pertussis: agglutination is not suitable. Respirology. 2011 Nov;16(8):1160-2.
Источник
Возбудитель коклюша, ДНК Bordetella pertussis
Возбудитель коклюша, ДНК Bordetella pertussis, ПЦР качественный — определение ДНК Bordetella pertussis, методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с детекцией в режиме «реального времени».
Bordetella pertussis-возбудитель коклюша.
Коклюш — острое, антропонозное, распространённое, бактериальное, инфекционное заболевание, несмотря на повсеместную вакцинацию.
Коклюш вызывается бактерией Bordetella pertussis. Это аэробная, неподвижная, грамотрицательная бактерия. Передается заболевание воздушно-капельным путем. Заболевание чаще всего встречается у детей до 5 лет, но может поражать и взрослых, в таком случае болезнь протекает атипично.
Инкубационный период составляет 5-10 дней (иногда до 3 недель), что говорит о длительном заболевании.
Заболевание начинается постепенно. В клиническом течении коклюша выделяют три периода: катаральный, это период неотличимый от обычной простуды, период спазматического кашля и период выздоровления. Возможно развитие острых и хронических осложнений, как инфекционных, так и неинфекционных. Большинство из них развивается в период спазматического кашля, который длится от 1 до 6 недель. В это период заразность снижается, но бывают случаи, что больные продолжают выделять возбудителя в течение 3 недель от начала кашля. В характерных случаях диагноз ставят по клинической картине, у людей, не имеющих иммунитета, классические проявления коклюша трудно спутать с другим заболеванием. У иммунных лиц симптомы не столь классические.
Клинические проявления коклюша
Клинические проявления коклюша: бронхит, плеврит, гнойный отит, ложный круп, самое частое осложнение — это пневмония. Иногда наблюдаются тяжелые осложнения, которые возникают в результате сильных кашлевых толчков (кровоизлияние в мозг, разрыв барабанных перепонок, пневмоторакс и т. д.).
Метод ПЦР (полимеразная цепная реакция)
Метод ПЦР (полимеразная цепная реакция) — позволяет идентифицировать наличие в биологическом материале искомого участка генетического материала. Данный метод ныне является самым быстрым и достоверным методом диагностики инфекционных заболеваний.
В отличие от других лабораторных методов, точность ПЦР в меньшей степени зависит от приема антибактериальных препаратов. Так, чувствительность метода при взятии биоматериала на 4-й день лечения эритромицином составила 89 % (бактериологического посева — 56 %), на 7-й день — 56 % (посева — 0). Поэтому ПЦР чаще выбирают для выявления B. pertussis у пациентов в катаральной стадии заболевания, если биоматериал сдается на фоне начатого лечения.
Показания:
- подозрение на коклюш;
- эпидемиологические исследования — обследование контактировавших с больным коклюшем;
- обследование взрослых, которые работают в детских учреждениях, с подозрением на коклюш;
- при симптомах коклюша в катаральной стадии: лихорадка, насморк, заложенность носа, слезотечение;
- при симптомах коклюша в пароксизмальной стадии: приступы интенсивного кашля, сопровождающиеся глубоким свистящим вдохом, рвотой, цианозом кожи лица;
- при обследовании пациента, находившегося в тесном контакте с больным коклюшем.
Подготовка
Соскоб из носо- и ротоглотки
Сдача соскоба осуществляется спустя 2-4 часа после последнего приема пищи. За 1 час до взятия биоматериала нельзя курить, чистить зубы. В течение 6 часов перед процедурой нельзя использовать спреи для орошения, назальные капли, таблетки для рассасывания.
Перед выполнением взятия соскоба, рот необходимо прополоскать кипяченой водой. Если полость носа заполнена слизью, перед процедурой необходимо высморкаться.
Интерпретация результатов
Единицы измерения: тест качественный результат выдаётся в терминах «обнаружено» или «не обнаружено».
Референсные значения: отрицательно — «не обнаружено».
Причины положительного результата:
- коклюш;
- транзиторное носительство.
Причины отрицательного результата:
- отсутствие коклюша;
- неправильное взятие биоматериала на исследование;
- ложноотрицательные результаты чаще наблюдаются при сдаче биоматериала в позднюю пароксизмальную стадию и стадию реконвалесценции, на фоне лечения антибиотиками, у подростков и взрослых пациентов.
Важные замечания
Анализ не предназначен для оценки эффективности лечения.
Результат исследования следует оценивать с помощью дополнительных эпидемиологических, клинических и лабораторных данных.
Источник